Novoprotein 類器官

近岸類器官課堂-大腸直腸癌

近岸類器官課堂-大腸直腸癌

Novoprotein  2022-06-30 19:44 發表於上海

大腸直腸癌(Colorectal Cancer, CRC)是全世界最常見的癌症之一。在過去的十年中,預防性篩檢計畫的推廣使死亡率大幅下降,然而在許多國家範圍內,結直腸癌仍然是癌症相關死亡的第二大原因【1】

幾十年來,癌細胞系和基因編輯小鼠【2】一直是CRC研究的主要模型,人類腫瘤患者衍生異種移植(PDX)也已成為了CRC研究的工具【3】。同時,能夠在體外進行長期培養的原發性/轉移性CRC類器官模型進一步擴大了研究人員的選擇範圍。類器官既可以像PDX一樣代表了個別患者的真實腫瘤情況,又兼具了細胞系的可繼代、易於高通量篩選等特性。因此,CRC類器官模型正廣泛應用於藥物研究、個人化醫療等領域。


本篇文章基於Nature Chemical Biology 【4】STAR protocols 【5】Nature protocols 【6】Cell 【7】發表的四篇文章,整理了人類結直腸癌組織來源的類器官培養方案。

圖1. 病人組織來源的CRC類器官研究方案【8】


細胞來源

切片樣本或手術樣本
培養基配方

組織處理
1. 將新鮮CRC組織樣本放入預冷的PBS中,剔除脂肪組織和壞死的腫瘤組織(通常為黃色或白色),只選取活的腫瘤組織(通常為粉紅色)。
2. 將CRC組織轉移到含有5 mL預冷的PBS溶液中清洗,並移除血液和碎片。為防止污染,需多次重複此步驟至液體變澄清。
3. 吸出PBS,將組織切割為1-2 mm3的小塊,此步驟可留存適量組織用於定序、免疫組化分析等。
4. 將剩餘組織塊切碎,並加入1 ml預冷的類器官培養基,用p1000吸頭將腫瘤碎片懸浮液轉移到含有5 ml解離培養基的離心管中,輕輕震盪混勻後,放置於37℃培養箱中解離1 h。每隔15min輕輕震盪或吹打混勻一次。
5. 加入8ml 預冷的DMEM/F12(含10%FBS)終止消化。
6. 將懸浮液經過70μm細胞篩網過濾,收集解離的細胞。
7. 將過濾的細胞懸浮液在4℃條件下450g離心5min。
8. 若細胞沉澱有明顯的紅色,則將細胞重懸於5ml的紅血球裂解液中,冰上孵育10min使紅血球裂解。
9. 將細胞懸浮液加入5ml DMEM/F12沖洗細胞一次,離心收集細胞沉澱後,加入1-2ml DMEM/F12重懸細胞,並進行台盼藍染色及細胞計數。
類器官培養
10. 將凍存的Matrigel在4℃下過夜解凍,在冰上以3:1的體積比將Matrigel與細胞懸浮液混合,輕輕吹打混勻避免產生氣泡。
11. 從37℃培養箱中取出預熱的24孔板,將80μl混合液接種在各孔中,注意需接種在孔的中心,避免接觸側壁。
12. 將24孔板室溫放置5min後,轉移至37℃,5%CO 2的培養箱中孵育10min,使Matrigel固化。
13. 在每個孔中緩慢滴加650μl 預熱的類器官培養基,確保基質膠被完全覆蓋。放於37℃,5%CO 2的培養箱中培養,每2-3天更換培養基(用於換液的類器官培養基內不含Y27632)。
類器官繼代
14. 吸出類器官培養液,機械分離Matrigel,然後加入500μl胰蛋白酶,放置於37℃培養箱中孵育1-2min後,用移液器多次吹打,從基質膠中釋放類器官。
15. 以含有10%FBS的DMEM/F12培養基終止消化,在4℃條件下300g離心5min。
16. 用冷PBS清洗後,再次4℃條件下300g離心5min。
17. 將所得沉澱依1:3-1:5的比例重複10-13步驟(具體比例透過類器官的匯合度確定),完成繼代。
類器官凍存
18. 取1-2個孔的類器官,消化離心後取細胞沉澱,加入1ml細胞凍存液。
19. 將細胞重懸後轉移至凍存管中,利用程序降溫盒緩慢降溫至-80℃。
20. 第二天,將樣本轉移到液態氮中長期儲存。
類器官復甦
21. 將液態氮凍存的CRC類器官放置在37℃水浴鍋中解凍,水浴時間不宜超過2min。
22. 將細胞懸浮液轉移至15ml離心管中,加入10ml預冷的DMEM/F12培養基(含10% FBS)。4℃條件下300g離心5min,取細胞沉澱。
23. 將所得沉澱物重複10-13步驟,完成CRC類器官復甦。

圖2. 顯微鏡下CRC類器官的形態,以及Ki-67、E-Cadherin標記物的表達【5】

利用類器官技術,能夠將CRC和正常結直腸組織在體外進行長期擴增,並且在微衛星穩定(MSS)來源的CRC類器官中發現,類器官模型能夠保留樣本的遺傳多樣性和形態穩定性【9】。大腸直腸(癌症)類器官的進一步優勢包括可以進行建庫、細胞異質性研究、實驗動物移植、個別病患分析和基因編輯,目前已經成為了疾病建模的優秀工具,未來可能在再生醫學領域大放異彩【10】

圖3. 大腸直腸(癌)類器官在基礎與臨床研究的應用【10】

Novoprotein自主研發的低內毒素Activin A、FGF系列、HGF、R-Spondin 1、Noggin和Wnt3a等細胞因子,內毒素低至<10EU/mg,具有高活性、高純度、高批間一致性,為類器官培養設計,已獲得市場認可,讓您研究放心!

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CX83 Human R-Spondin 1 (C-6His)

參考文獻:
【1】TORRE, Lindsey A., et al. Global cancer statistics, 2012. CA: a cancer journal for clinicians , 2015, 65.2: 87-108.
【2】EVANS, Jonathan P., et al. From mice to men: Murine models of colorectal cancer for use in translational research.  Critical reviews in oncology/hematology , 2016, 98: 94-105.
【3】BROWN, Kai M., et al. Patient-derived xenograft models of colorectal cancer in pre-clinical research: a systematic review.  Oncotarget , 2016, 7.40: 66212.
【4】TOSHIMITSU, Kohta, et al. Organoid screening reveals epigenetic vulnerabilities in human colorectal cancer.  Nature Chemical Biology , 2022, 18.6: 605-614.
【5】BERGIN, Christopher J., et al. Protocol for serial organoid formation assay using primary colorectal cancer tissues to evaluate cancer stem cell activity.  STAR protocols , 2022, 3.18: 101218.
【6】FUMAGALLI, Arianna, et al. A surgical orthotopic organoid transplantation approach in mice to visualize and study colorectal cancer progression. Nature protocols , 2018, 13.2: 235-247.
【7】VAN DE WETERING, Marc, et al. Prospective derivation of a living organoid biobank of colorectal cancer patients. Cell , 2015, 161.4: 933-945.
【8】SASAKI, Nobuo, et al. Studying cellular heterogeneity and drug sensitivity in colorectal cancer using organoid technology.  Current Opinion in Genetics & Development , 2018, 52: 117-122.
【9】BEHJATI, Sam, et al. Genome sequencing of normal cells reveals developmental lineages and mutational processes. Nature , 2014, 513.7518: 422-425.
【10】BARBÁCHANO, Antonio, et al. Organoids and colorectal cancer. Cancers , 2021, 13.11: 2657.


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