Novoprotein 類器官

近岸類器官課堂-小血管,大網絡

血管是胚胎最早發育的器官之一,也是所有其它器官功能的基礎。

Novoprotein 2022-11-04 20:00 發表於浙江

血管是胚胎最早發育的器官之一,也是所有其它器官功能的基礎。血管系統由兩種細胞類型構成:內皮細胞(Endothelial cells)和壁細胞(Mural cells),其中壁細胞是周細胞(Pericytes, PC)和血管平滑肌細胞(Vascular smooth muscle cells, vSMCs)的統稱。內皮細胞組成血管的內壁,是血管管腔內血液及其他血管壁(單層鱗狀上皮)的介面;而壁細胞在維持血管壁的完整性方面起著關鍵作用【1 。在發育過程中,在纖維母細胞生長因子2 (FGF-2)、骨形態發生蛋白4 (BMP4)和血管內皮生長因子A (VEGF-A)的刺激下,內皮細胞在中胚層祖細胞中產生,並組成原始管狀網。隨後,在血管生成的過程中,原有的神經叢進行重塑,新的血管發芽和分支,直到一個成熟的循環網絡形成【2】

本篇文章基於Nature protocols 【3】發表的文章,整理了人類多能幹細胞(hPSCs)來源的血管類器官培養方案。培養過程遵循發育原理,依靠上述生長因子進行誘導分化,最終培養成為血管類器官網絡。

圖1. hPSCs來源的血管類器官培養方案【3】
細胞來源
hPSCs
培養試劑配方

hPSCs培養
1. 將凍存的Matrigel在4℃下過夜解凍,在6孔板的每孔滴加1ml冷的Matrigel,旋動6孔板使Matrigel分佈均勻。接著轉移至37℃條件下培養10min使其凝固,使用前需室溫靜置1h。
2. 將hPSCs接種在包被Matrigel的6孔板中,每孔加入3ml E8培養基,放置在37℃,5%CO 2的培養箱中,培養至細胞匯合度約為75–85%、且大部分無分化的狀態時,吸出培養基。
3. 向hPSCs中加入0.5 mM EDTA洗滌細胞一次。
4. 吸去EDTA溶液,每孔加入0.6ml Accutase,並將培養皿放置在37℃解離約3-5min,直到所有的細胞變圓。
5. 在每個孔中加入5ml的hPSCs培養基,並以0.1%台盼藍進行染色計數。
6. 將所有細胞轉移至15ml離心管中,室溫下300g離心3min,收集沉澱細胞。6孔板中每孔接種2×10 5個細胞,加入預熱的3ml hPSCs培養基,放置於37℃,5%CO 2培養箱中進行培養。
誘導中胚層分化
7.  hPSCs培養1天至形成具有平滑邊界的聚集體,直徑>50-100 µm 。
8. 聚集體形成後,將所有細胞轉移至15ml離心管中,並依靠重力自然沉澱(注意:不建議將聚集體離心處理)。靜置15-20min後,小心吸去培養基上清。
9. 將聚集體以10ml hPSCs中胚層分化培養基輕輕重懸,加入低吸附的6孔板中,每孔3ml,放置在37℃,5%CO 2培養箱中孵育3天以誘導中層分化,培養期間每天用1ml槍頭吹打避免過度聚合。
10. 重複步驟8,將培養基替換為中胚層分化培養基-2,放置於37℃,5%CO 2培養箱中培養2天。
血管類器官形成
11. 將凍存的Matrigel在4℃下過夜解凍,在12孔板中每孔鋪0.5ml 第一層膠原蛋白(1.5mg/ml collagen I+ 25% Matrigel),輕輕旋轉孔板使溶液分佈均勻。
12. 將12孔板放置在37℃條件下固化2小時。
13. 依步驟8收取細胞沉澱,加入1ml StemPro-34 SFM完全培養基清洗細胞一次。
14. 計算聚集體的數量,將聚集體以Collagen I 溶液重懸並置於冰上,調整聚集體的密度為40-60個細胞團/50μl。
15. 從培養箱中取出含有第一層膠原蛋白的12孔板,並小心地在12孔板的每個孔中加入0.5 mL含細胞聚集體的Collagen I溶液。前後晃動平板,使細胞均勻分佈在孔內。
16. 將12孔板放置在37℃條件下固化2h。
17. 加入預熱的3ml 血管分化培養基,放置於37℃,5%CO 2培養箱中進行培養。血管芽會在培養的1-3天出現。培養3天後換液,之後每隔一天換液一次。
18. 大約10天後可以將血管類器官固定染色或採用其它方案進行下一步分析。
圖2. 血管類器官的形態【3】

血管類器官的應用前景
血管是血液運輸營養物質和氧氣的管道,對維持組織和器官的穩態有著重要的作用。目前已知有多種疾病與血管異常有關。在成年人中,血管功能障礙與中風【4】、心臟病【5】、糖尿病【6】、動脈粥狀硬化【7】、癌症【8】等主要疾病息息相關。
其次,類器官技術雖然已經日趨成熟,但仍有一些限制阻礙了其更廣泛的應用。目前3D培養中的類器官僅依賴被動擴散來交換營養物質、氧氣和代謝廢物,然而擴散的有效距離通常不超過300μm,這也導致類器官的中心常常發生壞死。透過將類器官與血管系統共同培養,可以顯著增加類器官的尺寸與壽命【9】,圖3列舉了類器官血管化的方案。
我們設想,當類器官血管化這項技術成熟時,它將成為類器官技術應用進一步擴大的寶貴工具。

圖3. 類器官血管化的方案【10】

Novoprotein自主研發的低內毒素Activin A、FGF系列、HGF、R-Spondin 1、Noggin和Wnt3a等細胞因子,內毒素低至<10EU/mg,具有高活性、高純度、高批間一致性,為類器官培養設計,已獲得市場認可,讓您研究放心!

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參考文獻:
【1】Ono, S., & Kabashima, K. Skin Immune System: Microanatomy. 2016, 443-452.
【2】Ferguson III JE, Kelley RW, Patterson C. Mechanisms of endothelial differentiation in embryonic vasculogenesis[J]. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology, 2005, 25(11): 246.
【3】Wimmer RA, Leopoldi A, Aichinger M, et al. Generation of blood vessel organoids from human pluripotent stem cells[J]. Nature protocols, 2019, 14(11): 3082-3100.
【4】Sommer C J. Ischemic stroke: experimental models and reality[J]. Acta neuropathologica, 2017, 133(2): 245-261.
【5】Lu L, Liu M, Sun RR, et al. Myocardial infarction: symptoms and treatments[J]. Cell biochemistry and biophysics, 2015, 72(3): 865-867.
【6】Liu SQ, Fung Y C. Changes in the rheological properties of blood vessel tissue remodeling in the course of development of diabetes[J]. Biorheology, 1992, 29(5-6): 443-457.
【7】Basatemur GL, Jørgensen HF, Clarke MCH, et al. Vascular smooth muscle cells in atherosclerosis[J]. Nature reviews cardiology, 2019, 16(12): 727-744.
【8】Zhang Y, Wang S, Dudley A C. Models and molecular mechanisms of blood vessel co-option by cancer cells[J]. Angiogenesis, 2020, 23(1): 17-25.
【9】Salzmann M, Schmid D, Geiger M. Regulation of Tissue Perfusion and Exchange of Solutes, Macromolecules, and Water Between Blood Vessels and the Interstitial Space[M]//Fundamentals of Vascular Biology. Springer, Cham, 2019: 65- 80.
【10】Zhang S, Wan Z, Kamm R D. Vascularized organoids on a chip: Strategies for engineering organoids with functional vasculature[J]. Lab on a Chip, 2021, 21(3): 473-488.

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